严重脓毒症与脓毒症休克的病死率高达40%~70%,而心肌损伤是造成难治性低血压和脓毒症死亡的重要因素。目前防治脓毒症心肌损伤主要通过纠正原发病和积极的早期液体复苏,尚无有效的方法。近年来,研究表明miRNA在心血管疾病中起到重要的调控作用[1],对各种心血管疾病等所致的心肌损伤起到保护作用[2, 3, 4, 5]。本课题组前期研究显示,miRNA-214 对由H2O2诱导的心肌细胞损伤具有减少凋亡等保护作用,但其对脓毒症心肌损伤的治疗作用尚有待探讨[6]。本研究拟建立小鼠脓毒症心肌损伤模型,通过调控心肌miRNA-214表达,评价miRNA-214对脓毒症心肌损伤的作用,为脓毒症心肌损伤的基因治疗提供参考。
1 材料与方法1.1 主要试剂和仪器
TRIzol RNA提取液(ambion公司,美国);miRNA cDNA合成试剂盒(GeneCopoeia公司,美国),实时荧光定量聚合酶链反应(RT-PCR)试剂盒(GeneCopoeia公司,美国);载有miRNA-214前体/抑制剂的腺病毒(invitrogen公司,美国);小鼠TNF-α、IL-6、IL-10酶联免疫吸附试验(ELISA)试剂盒(联科公司,杭州,中国),小鼠cTnI、BNP ELISA试剂盒(百沃公司,上海,中国);Annexin/PI凋亡试剂盒(联科公司,杭州,中国);实时定量PCR仪(ABI7500,ABI公司,美国);Epics-XL流式细胞仪(Beckman Coulter公司,美国)。
1.2 动物选择及分组清洁级雄性昆明小鼠66只,体质量25~30 g,由河北医科大学实验动物中心提供。随机(随机数字法)分为4组:假手术组(Sham组,n=18)、脓毒症组(CLP组,n=18)、miRNA-214前体+脓毒症组(前体组,n=12)、miRNA-214抑制剂+脓毒症组(抑制剂组,n=12),剩余6只小鼠应用miRNA-214前体和抑制剂转染用于空载病毒对照及miRNA-214转染情况检测。
1.3 模型制备及分组处理适应环境3~5 d后,采用盲肠结扎穿孔术制备脓毒症模型,术前禁食12 h,自由饮水。腹腔注射10%水合氯醛(3 mL/kg)麻醉下仰卧固定,腹部消毒,铺无菌洞巾,沿腹正中线作1.5 cm纵行切口,分离盲肠,用3.0丝线于回盲瓣下方结扎盲肠根部,用18号针穿刺贯穿盲肠3次,并留置一条1 cm长橡皮引流条,挤压盲肠使粪便溢出,然后将盲肠还纳腹腔,逐层缝合腹壁切口。Sham组暴露盲肠后缝合腹壁切口,不作穿刺处理。miRNA-214前体组、抑制剂组分别以0.2 mL(109 pfu/mL)经尾静脉注射载有miRNA-214前体和miRNA-214抑制剂的腺病毒后4 d行CLP术。
1.4 标本处理于下腔静脉取血,静置2 h,2 000 r/min离心20 min,取上清液,-80 ℃保存;取心室肌组织,液氮速冻,-80 ℃保存,用于下述指标测定。
1.5 观察指标 1.5.1 心肌组织miRNA-214表达水平的检测采用RT-PCR法测定心肌组织miRNA-214的表达水平,miRNA-214和U6引物由广州复能公司提供。按照TRIzol试剂要求提取心肌组织RNA,采用超微量紫外分光光度计分别测定260 nm和280 nm处吸光度值,鉴定纯度及测定浓度。参照miRNA cDNA合成试剂盒行逆转录,反应体系总体积为20 μL;逆转录反应条件:37 ℃ 60 min,85 ℃ 5 min。实时荧光定量PCR:反应体系总体积20 μL;扩增条件:95 ℃预变性10 min,95 ℃变性10 s,60 ℃退火20 s,72 ℃延伸20 s,40个循环。以U6为内参,结果采用2-ΔΔCt法以相对表达倍数表示。
1.5.2 血清心肌酶及心肌组织炎性因子浓度的测定血清和心肌组织自-80 ℃冰箱取出,4 ℃复融,匀浆心肌组织,加入灭菌蒸馏水,低温离心机4 000 r/min离心10 min,取组织上清液,参照ELISA试剂盒说明书,绘制标准曲线和回归方程,测定样品吸光度,代入标准曲线计算样品浓度。
1.5.3 心肌细胞凋亡率的测定将心肌组织置于100目尼龙网上,下置一平皿,眼科剪刀将组织剪碎,用眼科镊研磨组织,并用生理盐水冲洗,收集混悬液,用300目铜网过滤去除细胞团块,后以1 000 r/min离心4 min,去除上清液,沉淀物即为单细胞悬液,调整其浓度为1×106/mL。将单细胞悬液置于5 mL流式管中,分别加入500 μL Buffer液、5 μL Annexin V/FITC和10 μL PI,摇匀后室温避光孵育15 min,采用流式细胞仪测定细胞凋亡率。
1.5.4 心肌组织病理学观察取心肌组织置于4%多聚甲醛固定,石蜡包埋、常规切片,HE染色,光镜下观察病理学结果,采集图片。
1.6 统计学方法采用SPSS 13.0统计学软件进行分析,计量资料以均数±标准差( x±s )表示,多组间比较应用单因素方差分析,组间差异比较采用SNK-q检验方法,以P<0.05为差异具有统计学意义。
2 结果2.1 小鼠术后一般状况观察
各组小鼠术后3~6 h清醒,Sham组、空载前体及抑制剂小鼠可正常饮水、进食;CLP组小鼠清醒后精神萎靡,反应差,活动少,竖毛,寒战,不饮水,食欲低下,眼角分泌物增多,随时间延长病态逐渐明显;前体组、抑制剂组小鼠均出现不同程度与CLP组小鼠相似的病态表现。
2.2 miRNA-214在CLP小鼠心肌组织中的表达情况与Sham组比较,CLP组miRNA-214的表达水平上调;CLP术后6、12、24hmiRNA-214表达分别是对应时相Sham组miR-214表达的2.28倍、1.89倍、1.53倍(F值分别为280.198、82.48、30.65; 均P<0.05)。见图 1。
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与Sham组对应时比较,aP<0.05 图 1 CLP小鼠心肌组织miRNA-214表达 Fig 1 MicroRNA-214 expression in mouse hearts after CLP |
与CLP组术后12 h比较,转染miRNA-214前体后miRNA-214表达是CLP组miRNA-214表达的1.86倍,而转染miRNA-214抑制剂后miR-214表达则是CLP组的15.5%(F=394.773,P<0.05)。见图 2。
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与CLP组比较,aP<0.05 图 2 术后12 h各组miRNA-214表达 Fig 2 Comparison of microRNA-214 expression among different groups after surgery at 12 h |
与Sham组对应时比较,CLP组心肌组织TNF-α、IL-6、IL-10及血清cTnI、BNP水平均显著升高(12 h F值分别为102.498、216.378、148.462、460.690、64.136; 24 h F值分别为35.158、61.116、59.496、286.220、103.634; 均P<0.05);与CLP组对应时比较,前体组心肌组织上清液TNF-α、IL-6及血清cTnI、BNP降低,IL-10水平升高;反之,抑制剂组各指标水平升高,IL-10水平降低(12 h F值分别为72.819、88.851、147.546、65.256、102.72; 24 h F值分别为50.836、76.167、100.290、60.763、52.580; 均P<0.05)。见表 1。
组别 | 时间点 | TNF-α(pg/mL) | IL-6(pg/mL) | IL-10(pg/mL) | cTnI(ng/mL) | BNP(pg/mL) |
Sham组 | 12 h | 283±33 | 73±21 | 50±13 | 0.52±0.05 | 54±10 |
24 h | 284±41 | 67±22 | 68±35 | 0.42±0.06 | 53±9 | |
CLP组 | 12 h | 573±62a | 354±42a | 376±64a | 6.1±0.6a | 133±22a |
24 h | 447±53b | 233±47b | 252±46b | 5.1±0.7b | 190±33b | |
前体组 | 12 h | 379±56c | 256±56c | 504±56c | 4.3±0.6c | 94±13c |
24 h | 202±29d | 183±25d | 342±47d | 3.3±0.5d | 127±22d | |
抑制剂组 | 12 h | 757±81c | 532±68c | 227±39c | 7.8±0.9c | 189±22c |
24 h | 511±65d | 379±44d | 168±25d | 6.8±1.0d | 231±30d | |
注:与Sham组术后12 h比较,aP<0.05,与Sham组术后24 h比较,bP<0.05;与CLP组术后12 h比较,cP<0.05,与CLP组术后24 h比较,dP<0.05 |
与Sham组对应时比较,CLP组心肌组织TNF-α、IL-6、IL-10及血清cTnI、BNP水平均显著升高(12 h F值分别为102.498、216.378、148.462、460.690、64.136; 24 h F值分别为35.158、61.116、59.496、286.220、103.634; 均P<0.05);与CLP组对应时比较,前体组心肌组织上清液TNF-α、IL-6及血清cTnI、BNP降低,IL-10水平升高;反之,抑制剂组各指标水平升高,IL-10水平降低(12 h F值分别为72.819、88.851、147.546、65.256、102.72; 24 h F值分别为50.836、76.167、100.290、60.763、52.580; 均P<0.05)。见表 1。
2.5 术后24 h各组心肌细胞凋亡率比较CLP组小鼠心肌细胞凋亡率(7.6±0.8)较Sham组(1.38±0.02)升高(F=385.516; P<0.05);与CLP组比较,前体组小鼠心肌细胞凋亡率降低(5.4±0.6),抑制剂组升高(9.7±1.0)(F=151.076,P<0.05)。
2.6 术后24 h各组心肌组织形态学比较Sham组心肌组织未见明显病理改变;CLP组心肌细胞可见空泡变性,心肌坏死,心肌纤维肿胀,间质水肿;前体组可见上述病理改变,程度有所减轻;抑制剂组心肌细胞水肿,空泡变性明显,心肌纤维断裂。见图 3。
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A:Sham组;B:CLP组;C:前体组;D:抑制剂组 图 3 术后24 h各组小鼠心脏病理切片(HE×200) Fig 3 Pathological changes of heart in mice after surgery at 24 h(HE×200) |
本研究采用经典的盲肠结扎穿孔方法制作小鼠脓毒症模型[7]。结果显示小鼠明显病态表现,光镜下心肌细胞水肿,纤维排列紊乱、水肿,心肌组织炎性指标与血清心肌酶学指标水平升高,提示存在明显的心肌损伤。近年miRNA在脓毒症防治中发挥的重要作用逐渐被认知,多种miRNA在脓毒症中表达异常,其中miRNA-132、miRNA-155、miRNA-150、miRNA-146 变化较为显著[8, 9, 10, 11],可能成为诊断脓毒症潜在的新型生物标记物[12]。研究表明,miRNA-214在缺血性心肌病、扩张性心肌病异常表达,发挥多种生物学效应[13]。研究表明,miRNA-214对氧化应激诱导的心肌细胞凋亡具有保护作用[6]。但迄今为止miRNA-214在脓毒症中的意义尚不清楚。
本研究采用RT-PCR技术发现,CLP小鼠心肌组织miRNA-214表达升高,6 h达假手术组2.28倍,24 h仍为1.53倍,提示脓毒症时伴有miRNA-214异常表达。本研究经尾静脉注射腺病毒转染干预miRNA-214表达,结果注射miRNA-214前体或抑制剂使心肌miRNA-214表达分别升高至CLP组的1.86倍和下降至CLP组的15.5%,提示该方法可有效调控心肌miRNA-214过表达和低表达。研究显示,与CLP组术后各时间点比较,前体组心肌组织促炎因子、心肌损伤标记物及心肌细胞凋亡率降低,抗炎因子IL-10水平升高;反之,抑制剂组各指标水平升高,IL-10水平降低,表明上调miRNA-214表达水平会减轻脓毒症小鼠炎症反应并对其心肌损伤有保护作用。 脓毒症时心肌损伤与炎症反应、氧化应激、细胞凋亡等因素密切相关。TNF-α和IL-6是导致脓毒症心肌损伤的主要炎症因子,除可通过核转录因子(NF-κB)引发炎症反应失控[14],还可通过激活caspase诱发心肌细胞凋亡[15],线粒体损伤在脓毒症心肌细胞凋亡中发挥重要作用[16]。脓毒症时组织缺血缺氧,氧自由基清除功能下降,氧自由基堆积损伤心肌,导致心肌细胞舒缩功能下降[17]。
miRNA-214对脓毒症心肌损伤的保护作用可能通过以下途径:(1)miRNA-214减轻炎症反应。已有研究显示,miR-146通过抑制TNF-α和IL-1受体mRNA表达以减少IL-1、TNF-α等炎症介质的释放[18]。miR-16也可直接结合TNF-α mRNA的3’非翻译区并促进其降解,具有防止炎症瀑布反应过度扩大的作用。本研究中miRNA-214过表达能促进抗炎因子释放,抑制促炎因子产生,提示miRNA-214可能通过与炎症通路中mRNA结合促其降解,抑制炎症反应。(2)miRNA-214减缓氧化应激。研究证明,miRNA-214在H2O2处理的心肌细胞中表达上调,且干预miRNA-214使其上调对氧化应激的心肌细胞具有保护作用[6]。(3)miRNA-214抑制心肌细胞凋亡。研究发现,减少心肌细胞凋亡可改善心功能[19],miRNA-214抑制细胞凋亡是通过抑制PTEN进而抑制磷脂酰肌醇-3羟基激酶/苏氨酸激酶(PI3K/Akt)凋亡通路起作用的[20] ,提示前体组上调miRNA-214可能通过加强对PTEN的抑制作用,阻止PI3K/Akt凋亡通路发挥作用,降低心肌细胞凋亡率,减轻心肌损伤。
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