中华急诊医学杂志  2015, Vol. 24 Issue (11): 1245-1247
内皮祖细胞移植对急性肺损伤大鼠基质金属蛋白酶-9表达的影响
毛梅, 袁凤, 卫丽, 邓晓玲    
400020 重庆,解放军第三二四医院干部病房

内皮祖细胞(endothelial progenitor cells,EPC)是一种多潜能干细胞,参与损伤血管的修复和重建,已广泛应用于缺血性疾病、心血管疾病和肿瘤的防治研究[1, 2, 3]。近年来研究发现EPC通过动员、迁移、归巢和分化等参与损伤肺组织的修复,并能减少炎症细胞的浸润、缓解肺损伤[4, 5]。基质金属蛋白酶-9(matrix metallo proteinases-9,MMP-9)主要由中性粒细胞、巨噬细胞所分泌,在炎症状态下MMP-9大量分泌造成肺损伤[6, 7]。本研究主要观察EPC移植后对急性肺损伤(acute lung injury,ALI)组织中MMP-9的影响,从而进一步探讨EPC移植对损伤肺组织修复的作用。

1 材料与方法 1.1 主要材料及试剂

同遗传背景的清洁级SD大鼠50只,体质量100~150 g,用于EPC的采集;清洁级成年SD大鼠36只,体质量250~300 g,随机(随机数字法)分为3组(n=12):PBS组、LPS组、EPC组。动物均由解放军第三军医大学实验动物中心提供,实验中对动物的处置符合动物伦理学标准。主要试剂:淋巴细胞分离液(天津灏洋生物制品公司)、RT-PCR试剂盒(TaKaRa公司)、兔抗大鼠MMP-9的一抗及相应的二抗(santa cruz公司)。

1.2 EPC的分离、培养及鉴定

EPC的分离、培养及鉴定的具体方法参见文献[4, 8, 9]。

1.3 动物分组及EPC移植

大鼠经1%戊巴比妥5 mg/kg腹腔麻醉后经尾静脉注入脂多糖(5 mg/kg)诱发ALI;ALI造模0.5 h后,取培养第10天的EPC,胰酶消化后用无菌PBS稀释悬液(2×106/0.5 mL)经大鼠尾静脉注入;EPC移植7 d后取大鼠肺组织置于-70 ℃保存备用。PBS组:等量的PBS/1 mL+ EPC悬液(2×106/0.5 mL);LPS组:等量的LPS/1 mL +等量的PBS/0.5 mL;EPC组:等量的LPS/1 mL +EPC悬液(2×106/0.5 mL)。

1.4 肺组织形态学观察及肺损伤评分

取大鼠右肺下叶,4%多聚甲醛固定,常规石蜡包埋,切片5 μm,苏木精-伊红染色,显微镜下观察肺组织形态变化;根据Bustos等[10]方法从四项指标进行肺损伤评分:(1)肺泡充血;(2)出血;(3)间隙或血管壁中性粒细胞浸润或聚集;(4)肺泡间隔增厚或透明膜形成;根据每项指标病变轻重进行0~4分半定量分析,累加各项评分的总分作为ALI的病理评分。

1.5 肺组织中MMP-9 mRNA的检测

采用RT-PCR方法,取冻存的肺组织,Trizol法提取总RNA,逆转录合成cDNA后进行PCR扩增。具体步骤按说明书操作。引物序列由大连宝生物公司设计并合成。如表 1所示。

表 1 MMP-9和Β-actin的引物及反应条件
引物名称序列扩增片段长度(bp)循环条件
MMP-9上游引物5‘CGGAGCACGGGGACGGGTATC-3’54194 ℃ 3 min,94 ℃,30 s
MMP-9下游引物5‘AAGACGAAGGGGAAGACGCACATC-3’56 ℃ 30 s,72 ℃1 min, 35 cycles
β-actin上游引物5‘TAAAGACCTCTATGCCAACACAG-3’24094 ℃,5 min; 94 ℃,30 s
β-actin下游引物5‘CACGATGGAGGGGCCGGACTCATC-3’55 ℃,1 min;72 ℃,45 s;35 cycles
1.6 Western-blot检测MMP-9的蛋白含量

取冻存的肺组织,加裂解液提取总蛋白,加变性缓冲液煮沸10 min变性。SDS-PAGE凝胶电泳,200 mA湿转 2 h。于5%BSA中封闭1 h,加入兔抗大鼠MMP-9的一抗(1∶500)4 ℃孵育过夜,TBS漂洗,加入HRP-山羊抗兔IgG(1∶ 1 000)室温下孵育1.5 h,TBS漂洗,ECL光化学法显色。结果经吸光度面积积分分析,与内参照β-actin产物条带的比值作为相对含量。

1.7 统计学方法

采用SPSS 16.0 统计学软件处理,计量数据以均数±标准差(x±s)表示,组间两两比较采用SNK-q法,以P <0.05为差异具有统计学意义。

2 结果 2.1 肺组织形态学观察及肺组织损伤评分

石蜡切片HE染色后可见PBS组肺泡腔结构完整;LPS组肺泡结构破坏、间隔增厚、间质增生,同时伴有大量炎性细胞浸润,与PBS组比较,肺损伤评分显著增加,差异有统计学意义(12.25±1.14 vs.1.83±0.58,t=-0.275,P <0.01);与LPS组比较,EPC组中大部分肺泡结构完整,肺间质增生减轻,炎症细胞浸润显著减少,肺损伤评分较LPS组显著降低(7.17±0.94 vs.12.25±1.14,t=19.56,P <0.05),见图 1~2

A:PBS组;B:LPS组;C:EPC组 图 1 肺组织HE染色(×200)
LPS组与PBS组比较,aP <0.05; EPC组与LPS组比较,bP <0.05 图 2 各组肺组织的肺损伤评分
2.2 RT-PCR检测肺组织中MMP-9的mRNA的表达

与PBS组比较,LPS组中MMP-9表达显著增加(1.49±0.14 vs. 0.44±0.03;t=-0.232,P <0.05);EPC组中MMP-9 mRNA的表达较LPS组显著减少,组间差异有统计学意义(0.69±0.25 vs.1.49±0.14; t=20.49,P <0.05),见图 3

LPS组与PBS组比较,aP <0.05; EPC组与LPS组比较,bP <0.05 图 3 RT-PCR检测MMP-9 mRNA的表达
2.3 肺组织中MMP-9蛋白的表达

LPS组中MMP-9蛋白的表达较PBS组显著增加(1.28±0.04 vs.0.24±0.03,t=-0.726,P <0.05),但EPC移植后显著降低了MMP-9蛋白的表达,组间差异有统计学意义(0.65±0.03 vs.1.28±0.04,t=40.85,P <0.05),见图 4

LPS组与PBS组比较,aP <0.05; EPC组与LPS组比较,bP <0.05 图 4 Western-blot检测MMP-9蛋白的表达
3 讨论

ALI是由感染、创伤、中毒、失血等病因使肺内炎症细胞聚集而介导的肺内失控性炎症反应。中性粒细胞、巨噬细胞等炎症细胞被激活后可释放多种炎症介质、中性丝氨酸和各种蛋白酶,释出的蛋白酶可引起弹性蛋白、蛋白多糖和胶原降解而导致细胞、血管基膜的损伤和组织结构的破坏。基质金属蛋白酶(MMPs)是一种能降解细胞外基质蛋白的内肽酶,MMP-9 是该家族中的一种,主要由中性粒细胞、巨噬细胞所分泌,是降解细胞基膜主要组分Ⅳ型胶原的重要酶类,它的分泌与激活可导致呼吸道上皮和血管内皮通透性增加、结构破坏,研究发现肺实质中的MMP-9 过表达时,则会引起严重的肺损伤。

EPC是来源于骨髓的原始干细胞,在缺氧、缺血、炎症、外伤等因素刺激下,能参与损伤血管的修复及微血管新生,EPC移植被认为是血管性疾病最有前景的治疗措施之一[11, 12]。近年来人们开始将EPC研究引入到炎症领域,在ALI/ARDS中也见报道,目前研究发现EPC移植后能显著减少炎症细胞浸润、降低肺泡-毛细血管膜的通透性,缓解肺组织损伤[4, 5, 13]。Kim等[14]和Jiang等[15]研究发现,间充质干细胞移植后显著降低了损伤组织中基质金属蛋白酶MMP-2/MMP-9的表达,缓解了组织损伤。因此,在本研究当中,选择了MMP-9作为观察指标,进一步探讨EPC移植促进血管修复、缓解肺损伤的可能机制。

本研究发现,给予LPS刺激后加重了肺损伤,HE染色可见LPS组的肺泡结构破坏,部分肺泡腔变小,内见较多的炎性细胞,肺损伤评分较PBS组显著增加(P <0.05);EPC组的大部分肺泡结构完整,肺泡结构破坏和炎性细胞浸润减轻,肺损伤评分较LPS组显著降低(P <0.05)。本实验同时联合RT-PCR和Western-blot方法检测了各组肺组织中MMP-9的含量,LPS组中MMP-9的表达量较PBS组显著增加(P <0.05),而EPC组中的MMP-9 mRNA和蛋白的表达量与LPS组比均降低,差异有统计学意义(P <0.05),提示LPS刺激导致肺内炎症细胞的浸润,促进了MMP-9等蛋白酶和炎症介质的大量释放,加重了肺损伤;但EPC移植后减少了炎性细胞浸润,抑制了炎症细胞释放各种蛋白酶和炎症介质,减少了蛋白酶对肺组织基膜胶原的降解,从而缓解了肺部损伤。

既往研究认为EPC通过直接整合到血管内皮单层和旁分泌的方式参与修复血管,维持肺泡-毛细血管膜结构稳定。本实验提示EPC移植后除直接整合修复血管外,还通过减少炎症细胞浸润、抑制基质金属蛋白酶MMP-9的释放,降低肺组织基膜胶原的降解,从而缓解肺损伤,此可能是EPC缓解肺损伤的另一重要机制。

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