脓毒症是由感染引起的一系列“瀑布样”级联放大炎症反应,使机体从正常免疫发展到过度炎症反应或炎症失控所致,已成为危重病患者的主要死亡原因之一。因此寻找可靠的早期脓毒症诊断及判断预后的生物学指标,并明确其在脓毒症发生发展中的作用机制十分必要。JAK/STAT途径是近些年发现的在细胞因子信号转导中起重要作用的信号通路。它能调控干扰素(IFN)、肿瘤坏死因子(TNF)、白介素(IL)等多种细胞因子基因的转录,因而与脓毒症关系密切。髓样细胞触发受体(TREMs)是新近发现的一种兴奋型受体,sTREM-1是由于蛋白水解作用从膜表面的TREM-1上脱落的可溶性形式,能触发及扩大细菌感染后细胞因子的级联反应,进一步影响脓毒症的病理过程,但其在脓毒症的作用机制少有报道。本实验通过复制腹腔感染性脓毒症模型大鼠,给予JAK/STAT通路阻滞剂干预,观察不同时间点大鼠一般情况和腹腔脏器变化,通过PCR技术检测肝组织sTREM-1的表达情况,从而探讨sTREM-1与JAK/STAT在脓毒症发病过程中的相互关系。
1 材料与方法 1.1 动物模型制作和分组174只雄性清洁级Wistar大鼠,由中国医学科学院生物工程研究所提供,体质量(304±11)g。于卫生部危重病急救医学重点实验室饲养一周后,随机(随机数字法)分为5组,各组各时间点存活动物全部处死。盲肠结扎穿孔[1](cecal ligation and puncture,CLP)复制腹腔脓毒症模型,即以2%戊巴比妥钠(Merck Millipor公司,德国)腹腔注射麻醉后沿腹正中线作一个1.5 cm长的切口,在盲肠根部结扎盲肠。用18号针在盲肠上穿通3 次形成盲肠漏,并留置一宽2 mm橡皮引流条贯通盲肠,以防针孔闭合。然后,将盲肠还纳腹腔,逐层缝合腹壁切口。术毕,立即皮下注射林格液(大冢制药有限公司,日本)50 mL/kg抗休克。
分组情况:正常对照组(n=6)麻醉后取内眦静脉血0.3 mL后处死动物;假手术组(n=24),动物于开关腹腔手术后分别于6、24、48、72 h取内眦静脉血0.3 mL后处死动物;CLP组(CLP组,n=48);CLP后分别于6、24、48、72 h取内眦静脉血0.3 mL后处死动物;JAK2抑制剂AG490干预组(AG490组,n=48);STAT抑制剂雷帕霉素(RPM)干预组(RPM组,n=48)。后2组分别于CLP前皮下注射AG490(Merck Millipor公司,德国) 8 mg/kg、RPM(Merck Millipor公司,德国) 0.4 mg/kg,并于CLP后6、24、48、72 h取内眦静脉血0.3 mL后处死动物。各组动物观察至不同时点处死,分别留取肝组织标本备用。
1.2 指标检测及方法流式细胞仪(Becton Dickinson,美国)定量检测外周血 CD4+CD25+Treg 细胞比例:取0.3 mL肝素抗凝全血,密度梯度离心法分离获得人外周血单个核细胞(peripheral blood mononuclear cell,PBMC),加入Percp标记的鼠抗人CD4抗体(Becton Dickinson公司,美国)5 μL,PE标记的鼠抗人CD25抗体(Becton Dickinson公司,美国)5 μL,设置同型对照抗体,暗处4 ℃孵育30 min,PBS 漂洗后加入1 mL 穿膜固定液60 min后,再加入 APC 标记的鼠抗人Foxp3 抗体(Santa Cruz Biotechnology公司,美国)4 μL ,暗处4 ℃孵育60 min,PBS漂洗后在流式细胞仪上检测CD4+、CD25+、Foxp3+细胞即CD4+CD25+Treg细胞在 CD4+T 细胞中的百分比。
实时定量逆转录聚合酶链反应检测肝组织中sTREM-1 mRNA的表达:称取适量肝组织,用超纯RNA提取试剂盒(CWbio.Co.Ltd,Cat#CW0581)提取组织样本中总RNA。采用RT-PCR技术对转录产物进行扩增,以三磷酸甘油醛脱氢酶(GAPDH)作为内参对照。大鼠sTREM-1序列(扩增片段为137 bp):5’-TATGCCAACAGCCAGAAGG-3’(上游);5’-GTCACTTGAAGGTCAGTCAT-3’ (下游);GAPDH 序列(扩增片段为138 bp):5’-TGGAGTC TACTGGCGTCTT-3’(上 游) ; 5’-TGTCATATTT CTCGTGGTTCA-3’(下游)。扩增产物经1 % 琼脂糖凝胶电泳后照相,用ABI 7500型荧光定量PCR仪,采用2-△△CT法进行数据的相对定量分析。
1.3 统计学方法用SPSS 20.0统计软件分析数据。计量资料用均数±标准差(x±s)表示,多组样本均数比较采用单因素方差分析,组间两两比较采用LSD-t检验,以P < 0.05为差异具有统计学意义。
2 结果 2.1 大鼠一般情况观察CLP前,大鼠进食水正常,活泼好动,皮毛光滑;CLP后,大鼠食欲差,精神萎靡,活动减少,毛发树立、干燥、颜色差。腹部解剖可见回肠组织肿胀,充血,随时间延长呈进行性加重,腹腔渗液增多伴恶臭,肝、脾、回肠组织黏连、充血肿胀等炎性改变显著。大鼠生存率曲线见图 1。
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图 1 脓毒症模型大鼠生存率曲线 Fig 1 Survival rate curve of sepsis model in rats |
CLP组外周血CD4+CD25+Treg细胞占CD4+T细胞的百分比随时间变化逐渐升高(组内不同时间点比较,P < 0.05),且CLP组外周血CD4+CD25+Treg细胞百分比显著高于对照组和假手术组(P < 0.05);术后6hAG490组外周血CD4+CD25+Treg细胞百分比与CLP组变化差异无统计学意义(P>0.05),术后24、48、72hAG490组外周血CD4+CD25+Treg细胞百分比较同一时间点CLP组降低(P < 0.05);RPM组外周血CD4+CD25+Treg细胞百分比较同时间点CLP组降低(P < 0.05)。见表 1,图 2。
组别 | 6 h | 24 h | 48 h | 72 h |
假手术组 | 2.55±0.62 | 2.45±0.59 | 2.57±0.63 | 2.38±0.47 |
CLP组 | 6.33±0.45 ab | 7.23±0.41 ab | 10.53±0.47 ab | 12.32±0.39 ab |
AG490组 | 6.37±0.27 | 6.35±0.76 c | 5.53±0.24 c | 7.38±0.25 c |
RPM组 | 4.87±0.26 d | 5.23±0.29 d | 6.07±0.23 d | 6.12±0.23 d |
F值 | 16.2 | 15.3 | 85.7 | 135.5 |
P值 | 0.001 | 0.001 | 0.001 | 0.001 |
注:对照组为(2.55±0.31)%;与对照组比较, a P<0.05;与假手术组比较, b P<0.05;与CLP组比较, c P<0.05, d P<0.05 |
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图 2 流式细胞检测不同时间点各组血中CD4+CD25+Foxp3+T细胞占CD4+T细胞比例 Fig 2 Percentage of CD4+CD25+ Foxp3+T regulatory cell in CD4+Tcells among each group at different intervals by flow cytometry |
CLP组肝组织sTREM-1 mRNA的表达显著高于对照组和假手术组(组间两两比较,P < 0.05),且CLP组肝组织sTREM-1 mRNA的表达随时间逐渐升高(各时间点组内比较,均P < 0.05)。
AG490组肝组织sTREM-1 mRNA的表达在术后6 h、24 h较同时间点CLP组肝组织sTREM-1 mRNA的表达差异无统计学意义(P>0.05),而在48 h和72hAG490组肝组织sTREM-1 mRNA的表达低于同时间点CLP组肝组织sTREM-1 mRNA的表达(P < 0.05)。
术后6hRPM组肝组织sTREM-1 mRNA的表达较CLP组肝组织sTREM-1 mRNA的表达差异无统计学意义(P>0.05),而术后24、48、72hRPM组肝组织sTREM-1 mRNA的表达显著低于同时间点CLP组肝组织sTREM-1 mRNA的表达(P < 0.05)。见表 2。
组别 | 6 h | 24 h | 48 h | 72 h |
假手术组 | 1.089±0.067 | 1.091±0.017 | 1.075±0.016 | 1.078±1.011 |
CLP组 | 1.592±0.036 ab | 2.082±0.021 ab | 2.592±0.055 ab | 3.204±0.013 ab |
AG490组 | 1.572±0.051 | 2.063±0.025 | 2.522±0.083 c | 3.153±0.021 c |
RPM组 | 1.581±0.017 | 1.486±0.019 d | 1.263±0.011 d | 1.115±0.022 d |
F值 | 54.5 | 245.1 | 326.8 | 880.5 |
P值 | 0.001 | 0.001 | 0.001 | 0.001 |
注:对照组为1.073±0.036;与对照组比较, a P<0.05;与假手术组比较, b P<0.05;与CLP组比较, c P<0.05, d P<0.05 |
Janus激酶-信号转导和转录激活因子(JAK/STAT)途径是近些年发现的在细胞因子信号转导中起重要作用的信号通路。JAK家族由4个成员组成:JAK1、JAK2、JAK3和Tyk2[2],其中JAK3分布较局限,主要存在于造血细胞中,而JAK1、JAK2、JAK3和Tyk2分布则较广泛,且参与干扰素7(IFN-7)、 白细胞介素(IL) 和生长激素等多种细胞因子和激素的信号转导过程[3]。STAT是JAK底物。据统计,STAT家族成员有7个:STAT1、2、3、4、5a、5b和6[4]。STAT家族功能复杂,参与细胞应激、生长和增殖等多种生物学效应,其中STAT1、STAT3与脓毒症关系密切[5]。
CD4+CD25+Foxp3+调节性T(Treg)细胞是一种功能强大的抑制性免疫调节细胞,参与脓毒症中的抗炎反应,CD4+CD25+Treg 细胞表达的上调可以介导机体处于抗炎为主的免疫抑制状态[6],从而影响炎症反应的结局。流式细胞检测结果显示,CLP组外周血CD4+CD25+Treg细胞占CD4+T细胞的百分比随时间变化逐渐升高,且显著高于对照组和假手术组。术后24、48、72hAG490组外周血CD4+CD25+Treg细胞百分比较同一时间点CLP组均降低,而各时间点RPM组外周血CD4+CD25+Treg细胞百分比均较同时间点CLP组降低。CD4+CD25+Treg细胞通过分泌IL-10等抑制性炎症因子发挥作用,而IL-10能活化STAT[7],阻断JAK/STAT通路后,IL-10作用受限,机体炎症反应失衡,加剧脓毒症进展,预后不良。万健等[8]、邵敏等[9]和陈坤等[10]研究也发现,CD4+CD25+Treg细胞比例增加与脓毒症严重程度成正比,可以用于预测脓毒症患者的预后。
髓样细胞触发受体(TREMs)是新近发现的通过具有免疫受体酪氨酸激活基序(ITAM)接头蛋白(DAP12)传递信号的一种兴奋型受体,Bouchon等[11]于2001年首次报道TREM-1作为急性炎症反应中的关键介质,触发并扩大了炎症反应,参与了脓毒症的发生。sTREM-1是由于蛋白水解作用从膜表面的TREM-1上脱落的缺乏跨膜域及胞内域的可溶性形式,其选择性表达于血液中性粒细胞和单核巨噬细胞表面[12],能触发及扩大细菌感染后细胞因子的级联反应,进一步影响脓毒症的病理过程。Meta分析发现,sTREM-1对脓毒症早期诊断有一定意义[13],但其最佳截断值有待进一步研究。另有研究发现,LPS能引起单核细胞和中性粒细胞TREM-1的表达明显增加[14]。越来越多的证据表明,sTREM-1是急性炎症反应中的关键介质,为脓毒症和多器官功能障碍患者病情变化及预后提供早期预警[15, 16, 17]。
本实验通过复制腹腔感染性脓毒症模型大鼠,给予JAK/STAT通路阻滞剂干预,观察不同时间点大鼠一般情况和腹腔脏器变化,通过PCR技术检测肝组织sTREM-1的表达情况,从而探讨sTREM-1与JAK/STAT通路在脓毒症发病过程中的相互关系。结果显示,CLP组肝组织sTREM-1 mRNA的表达明显高于对照组和假手术组,且CLP组肝组织sTREM-1 mRNA的表达随时间逐渐升高,表明脓毒症早期sTREM-1水平即开始升高,且随着病情加重其水平迅速上升。本研究同时也观察到,术后6 h、24hAG490组肝组织sTREM-1 mRNA的表达较同时间点CLP组差异无统计学意义,而在48 h和72hAG490组肝组织sTREM-1 mRNA的表达低于同时间点CLP组肝组织sTREM-1 mRNA的表达。术后6hRPM组肝组织sTREM-1 mRNA的表达较CLP组差异无统计学意义,而术后24、48、72hRPM组肝组织sTREM-1 mRNA的表达显著低于同时间点CLP组肝组织sTREM-1 mRNA的表达。提示sTREM-1因子与JAK/STAT通路有关,阻断JAK/STAT通路能够降低sTREM-1 mRNA的表达,减缓脓毒症炎症反应的进展。同时,笔者也观察到sTREM-1因子表达趋势与CD4+CD25+Treg细胞趋势相似,猜测sTREM-1可能不仅参与了促炎反应,也直接或间接参与了抑炎反应,从而导致了脓毒症的发生和发展。
综上所述,sTREM-1触发并扩大了炎症反应,参与了脓毒症的发生,本实验研究结果表明,阻断JAK/STAT通路能够降低sTREM-1 mRNA的表达,减轻炎症反应。Wang等[18]研究显示,通过阻断TREM-1信号转导,可减少IL-1、TNF-α、单核细胞趋化蛋白-1(MCP-1)和γ-干扰素(IFN-γ)等炎症因子的释放。这些都提示阻断sTREM-1通路有望成为脓毒症治疗的新手段。对sTREM-1因子作用机制的研究尚处于初级阶段,仍需进一步深入研究。
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